ガンマレトロウイルスは レトロウイルス 科 に属する属 です。例としては、マウス白血病ウイルス やネコ白血病ウイルス が挙げられます。これらのウイルスは、哺乳類、爬虫類、鳥類において、様々な肉腫、白血病、免疫不全を引き起こします。 [ 1 ]
導入 外因性ガンマレトロウイルスと密接に関連する多くの内因性レトロウイルスは 、哺乳類(ヒトを含む)、鳥類、爬虫類、両生類のDNAに存在します。[ 2 ] また、多くのウイルスは、コアカプシド化シグナル と呼ばれる保存されたRNA構造要素を共有しています。[ 3 ]
鳥類細網内皮症ウイルスは厳密には鳥類のウイルスではなく、1930年代にマラリアの研究中に偶然鳥類に持ち込まれた哺乳類のウイルスであると思われます。[ 4 ]
遺伝子治療 の潜在的なベクターとして、ガンマレトロウイルスはレンチウイルスベクターとしてHIV に比べていくつかの利点を有する。具体的には、ガンマレトロウイルスのパッケージングシステムは、gag遺伝子、pol遺伝子、または補助遺伝子のコード配列と重複する配列を組み込む必要がない。[ 5 ]
ガンマレトロウイルスは動物に幅広い影響を及ぼします。ガン、特に白血病やリンパ腫などの癌、様々な神経疾患、そして多くの種における免疫不全症など、様々な疾患との関連が指摘されています。ガンマレトロウイルスは他のレトロウイルスと同様に、プラス一本鎖RNAを二本鎖DNAに逆転写します。この二本鎖DNAは非常に安定しており、宿主ゲノムに容易に組み込まれます。ガンマレトロウイルスの例として、モロニーマウス白血病ウイルス、異種指向性MuLB関連ウイルス、ネコ白血病ウイルス、ネコ肉腫ウイルスなどが挙げられます。[ 6 ] [ 7 ] [ 8 ]
ガンマレトロウイルスは、実験研究において非常によく用いられるレトロウイルスベクターです。これらのベクターは、遺伝子治療 や遺伝子導入に不可欠です。これらのベクターがこれほど有用な理由は、ゲノムが非常にシンプルで使いやすいためです。レトロウイルスは宿主細胞のゲノムに非常によく組み込まれるため、ゲノムの長期発現が可能になります。レトロウイルスベクターとして一般的に用いられるガンマレトロウイルスの一つに、モロニーマウス白血病ウイルスがあります。[ 7 ] [ 9 ]
異種指向性マウス白血病ウイルス関連ウイルス (XMRV)と呼ばれる特定のガンマレトロウイルスが、研究室で前立腺がん組織に感染することが判明しました。XMRVは、1990年代半ばに前立腺がん研究者により、2つの内因性マウスレトロウイルス間の組み換えの結果として偶然に観察された組み換えウイルスです。ヒトの組織に感染する可能性がありますが、感染に関連する既知の疾患はなく、[ 10 ] [ 11 ] [ 12 ] 研究室外に存在する可能性は低いです。[ 13 ] 2009年に慢性疲労症候群 の患者の血液細胞でXMRVが検出されたと主張され、論争と最終的な撤回を引き起こしました。[ 13 ] [ 14 ] マウス白血病ウイルス関連ウイルスまたはマウス白血病ウイルスに関連していると主張された50を超えるヒトがん細胞株がありました。肺がん細胞株でマウスガンマレトロウイルスが発見されたと主張されています。これらのウイルスが癌の発生にどのような役割を果たしているかは不明であったが、癌の腫瘍発生段階で腫瘍抑制遺伝子を阻害することで最も蔓延していると考えられていた。[ 8 ]
ウイルスの分類 ガンマレトロウイルスはレトロウイルス 科に属します。この属には以下の種が含まれており、学名とそれぞれの種の代表ウイルス名を記載しています。[ 15 ]
宿主とリザーバー ガンマレトロウイルスは、マウス、ネコ、ブタ、霊長類、ウシ、鳥など、様々な哺乳類種に見られるため、人獣共通感染ウイルスと考えられています。しかし、多くのガンマレトロウイルスの主な宿主はコウモリです。コウモリは様々な病原体に長期間曝露されても何の兆候も示さないため、コウモリは他の種に害を及ぼす可能性のあるウイルスに対する免疫を獲得する能力を持っているという議論があります。したがって、コウモリは1種類だけでなく複数の種類のガンマレトロウイルスを保有している可能性があります。この主張は、シーケンシング・トランスクリプトーム・プロファイリング技術とポリメラーゼ連鎖反応によって裏付けられています。研究者たちは、コウモリがガンマレトロウイルスの主な宿主であるという主張を確固たるものにするために、複数の異なる種類のコウモリ種についても調査しました。ガンマレトロウイルスは、水平方向(動物から動物へ)、または垂直方向(親から子へ)に伝播する可能性があります。[ 16 ]
バンドウイルカのゲノム中に、新たなガンマレトロウイルス のリザーバーが発見された。このガンマレトロウイルスはTursiops truncates内在性レトロウイルスと呼ばれ、現存する哺乳類の内在性ガンマレトロウイルスに由来すると考えられていた。Tursiops truncates内在性レトロウイルスの侵入は約1000万~1900万年前に遡り、300万年以上前に侵入したシャチの内在性ガンマレトロウイルスで確認された。2009年には、シャチの一種と他の9種のクジラ目動物のゲノムから、別の内在性ガンマレトロウイルスが検出されている。つまり、ガンマレトロウイルスのゲノムは水生哺乳類と陸生哺乳類の両方に存在することになる。[ 17 ]
構造 模式図:ガンマレトロウイルス の未熟ウイルス粒子と成熟ウイルス粒子 [ 6 ] ガンマレトロウイルスは、直径80~100 nmの球状のエンベロープを持つウイルス粒子です。ヌクレオカプシド、逆転写酵素、インテグラーゼ、カプシド、プロテアーゼ、エンベロープ、表面構造から構成されています。ヌクレオカプシドはウイルス粒子内の核酸タンパク質集合体であり、ウイルス粒子の下部構造です。逆転写酵素は、ウイルス粒子の複製サイクルにおいてRNAをDNAに変換する酵素です。インテグラーゼは逆転写酵素と連携してRNAをDNAに変換します。カプシドはウイルス粒子のゲノムを囲むタンパク質殻で、主な機能はゲノムを保護し、宿主細胞に届けることです。ウイルスエンベロープはウイルスカプシドを囲む膜で、宿主細胞由来の脂質二重層です。[ 6 ] [ 18 ]
ゲノム ガンマレトロウイルス ゲノムマップ[ 6 ] XMRV ガンマレトロウイルスの画像 ガンマレトロウイルスのゲノムは、約8.3 kbの一本鎖RNA(+)ゲノムである。5'末端キャップと3'末端ポリAテールを有し、5'末端と3'末端の両方に2つの長い末端反復領域を含む。これらの長い末端反復領域は、U5、R、U3領域に加え、3'末端にポリプリン領域、5'末端にプライマー結合部位を有する。典型的なガンマレトロウイルスゲノムは、 gag遺伝子 、pol遺伝子 、およびenv遺伝子 を含む。[ 6 ]
複製サイクル ガンマレトロウイルスは寄生虫として作用し、細胞宿主因子を利用してゲノムを宿主の細胞核に運び込み、そこで細胞の機構を利用してウイルスゲノムを複製し、宿主生物全体に拡散を続けます。ガンマレトロウイルスはDNA中間体ゲノムを持つ一本鎖RNA(+)であるため、ウイルスRNAゲノムをmRNAに直接複製する能力を有しています。また、 RNAゲノムをDNAに逆転写する 能力も有しています。[ 18 ]
ウイルス粒子はSU糖タンパク質 を介して宿主細胞受容体に付着し、TM糖タンパク質 が細胞膜との融合を補助する。次にウイルスは脱殻を開始し、逆転写によって一本鎖RNA(+)ゲノムから線状二本鎖DNA分子が形成される。逆転写を担う酵素は逆転写酵素 である。宿主の核膜は有糸分裂中に分解され、ウイルスの二本鎖DNAは宿主の核に進入できる。ウイルスの二本鎖DNAは、ウイルスDNAを宿主DNAに組み込む酵素であるウイルスインテグラーゼを介して宿主細胞ゲノムに組み込まれる。このウイルスはプロウイルス と呼ばれるようになり、これはガンマレトロウイルスDNAが宿主細胞ゲノムに組み込まれ、ウイルスmRNAおよびゲノムRNAの形成の鋳型となっていることを意味する。二本鎖DNAはポリメラーゼIIによって転写され、スプライスされたRNA鎖とスプライスされていないRNA鎖の両方が生成されます。これらのスプライスされたRNA鎖は宿主細胞の核から排出されます。スプライスされていないウイルスRNAの翻訳により、env、gag、gag-polポリタンパク質が生成されます。Envはポリペプチド前駆体となり、切断されて受容体結合表面を形成します。次に、ウイルス粒子は宿主細胞膜上で組み立てられ、ウイルスRNAゲノムがパッケージングされます。ウイルス粒子は細胞膜から出芽し、宿主細胞へと放出されます。ウイルス粒子が宿主細胞から放出された後、活性ウイルス粒子が次に遭遇する細胞上でこのプロセスが繰り返されます。[ 6 ] [ 18 ]
関連する病気と流行
コアラレトロウイルス(KoRV)ガンマレトロウイルスの発生はコアラでよく見られます。実際、これらのウイルスは、ヒト免疫不全症候群に似たコアラ免疫不全症候群(KIDS)との関連が指摘されています。コアラ免疫不全症候群は、様々なコアラの免疫系に影響を及ぼし、病気に感染したり、癌と診断されたりする可能性が高くなります。HIVと同様に、コアラ免疫不全症候群は子孫に受け継がれるだけでなく、他のコアラや動物種にも感染する可能性があります。このウイルスは飼育下のコアラによく見られます。実際、クイーンズランド州の飼育下のコアラの個体群では、死亡例の80%がガンマレトロウイルスに関連しています。このコロニーは、近い将来にコアラの個体群が絶滅する可能性があるとして警戒を強めており、研究者たちはクイーンズランド州で流行が発生することを懸念しています。[ 19 ] [ 20 ]
KoRVはガンマレトロウイルス属に属し、GaLVと80%のヌクレオチド相同性があり近縁である。[ 21 ] このレトロウイルスは、オーストラリア大陸で感染した飼育下および野生のコアラの集団に存在するリンパ腫や白血病から分離されている。[ 22 ] そのため、ウイルス学のジャーナルに掲載された研究「 野生のクイーンズランド州のコアラの集団に侵入し蔓延するコアラレトロウイルスの分子動力学と伝播様式」では、 腫瘍を発症したコアラの80%がKoRV-B陽性でもあったことを強調し、白血病とリンパ腫の広範な感染とKoRVとの関連を明らかにした。現在、KoRVは生殖細胞 感染を引き起こす唯一のレトロウイルスであるため、科学者にとってレトロウイルスの内在化を制御するプロセスを理解する機会を提供している。[ 23 ]
KoRVには9つのサブタイプが特定されており、主な株はKoRV-A、KoRV-B、およびKoRV-Jで、免疫調節を引き起こし、腫瘍性症候群やクラミジア症を引き起こす。さらに、この研究では、腹部リンパ腫の発症、非特異的増殖性/骨髄疾患、骨軟骨腫 、中皮腫 など、KoRV-Bに関連する疾患が実証されている。[ 24 ] TarlingtonらによるNature誌 の記事は、クイーンズランド州で見つかった集団で生殖細胞系感染が存在するという疫学的証拠を提供しているが、南オーストラリアの一部の個人はプロウイルスを欠いており、過去100~200年の間に北オーストラリアでレトロウイルスの内在化が始まったことを示唆している。[ 23 ] KoRV-Aが宿主のゲノムに内在的に統合される病理学的研究は、年間3%の発生率を低下させる治療用ワクチンの開発に不可欠である。[ 25 ] [ 24 ]
ネコ白血病ウイルス(FeLV)FeLV は、オルトレトロウイルス 亜科およびレトロウイルス 科に属する発癌性ガンマレトロウイルスです。[ 26 ] 1964 年にリンパ肉腫を患った猫のクラスターで初めて発見されました。 FeLV は骨髄および免疫系内で免疫調節を引き起こす感染性因子として特定されており、感染した猫はさまざまな二次感染および日和見感染にかかりやすくなります。[ 27 ] FeLV の関連疾患には、リンパ腫、非再生性貧血、胸腺変性疾患などがあります。[ 28 ] 現在、獣医による介入、ワクチン接種、バイオセキュリティ プロトコル、感染動物の検疫または安楽死により、1970 年代および 1980 年代以降、FeLV の蔓延は減少しています。[ 29 ] FeLV P27 の検出を中心とした正確な血液検査手順により、2 つの方法で診断が可能になります。酵素結合免疫吸着測定法(ELISA )は血流中に存在する遊離FeLV粒子の存在を検出し、間接免疫蛍光抗体法(IFA)は白血球内のレトロウイルス粒子の存在を検出します。[ 30 ]
FeLVは、唾液、血液、母乳、尿、糞便などの生体物質を介して水平および垂直感染します。さらに、出生後または出生前の親子関係においても感染が起こり得ます。寄生ノミがFeLVのウイルスベクターとして有効であることが2003年に確認され、感染者との濃厚接触がなくてもFeLVが水平感染することが確認されました。[ 31 ] さらに、FeLVにはA、B、Cの3つの系統があります。FeLV-Aは、特にワクチン接種を受けていない動物において、自然界で感染する最も病原性の低い系統です。[ 32 ] 一方、FeLV-Bは、外因性のFeLV-Aと内因性の配列の組み換えによって生成されます(enFeLV)。一方、FeLV-Cの起源に関する限られた研究は、組み換え または突然変異の可能性を示唆しています。[ 33 ]
豚内因性レトロウイルス(PERV)PERVは1970年に初めて記載され、ガンマレトロウイルス属、オルソレトロウイルス亜科、レトロウイルス科に属していました。[ 34 ] PERVは、PERV-A、PERV-B、PERV-Cの3つの複製能のあるサブタイプに分類されます。PERV-AとPERV-Bは、ヒトとブタの細胞に感染することができるポリトロピックウイルスですが、PERV-Cは ブタの 細胞にのみ影響を与えるエコトロピック ウイルスです。[ 35 ] PERVのヒト細胞における種間伝播がin vitroで 実証されており、ブタの細胞、組織、臓器の異種移植 に関する懸念が生じています。 [ 35 ] しかし、PERVのin vivo 診断はまだ行われていません。豚の神経細胞や皮膚移植を受けた人、豚の肝臓や膵臓の異種移植を受けた患者、豚の組織に接触する屠殺者など。[ 34 ]
ホスト制限 様々なガンマレトロウイルスに対するワクチンが発見され、提供されています。ナミビアは世界最大の野生チーター個体群を抱えており、この種の生態と自然行動を理解する上で重要な個体群となっています。2002年6月、ナミビアのチーター個体群にウイルス感染が深刻な健康問題を引き起こす可能性があるという懸念から、研究者たちは動物を用いたネコ白血病ウイルス検査を開始しました。この検査を通じて、ネコ白血病ウイルスワクチン開発のための抗体が採取されました。このワクチンはナミビアのチーターにおいて有効であることが証明され、ワクチン接種を受けたチーターの86%がネコ白血病ウイルス抗体陽性反応を示しました。このように高いワクチン接種率により、チーターはネコ白血病ウイルスなどのガンマレトロウイルスの発生を防ぐのに十分な数のワクチン接種を受けている状態にあります。[ 36 ]
参考文献 ^ マーフィー, フレデリック A.; ギブス, E.; ホルジネック, マリアン; スタッダート, マイケル (1999).獣医ウイルス学 (第3版). サンディエゴ: アカデミック・プレス. p. 364. ISBN 9780080552033 。 ^ Hu, L (2006年6月). 「子宮内膜症および卵巣癌におけるヒト内因性ガンマレトロウイルス配列の発現」. AIDS Res Hum Retroviruses . 22 (6): 551–7 . doi : 10.1089/aid.2006.22.551 . PMID 16796530 . ^ D'Souza V, Dey A, Habib D, Summers MF (2004). 「モロニーマウス白血病ウイルスの101ヌクレオチドコアエンカプシド化シグナルのNMR構造」. Journal of Molecular Biology . 337 (2): 427–42 . doi : 10.1016/j.jmb.2004.01.037 . PMID 15003457 . ^ Niewiadomska, AM; Gifford, RJ (2013). 「細網内皮 症 ウイルスの驚くべき進化史」 . PLOS Biology . 11 (8) e1001642. doi : 10.1371/journal.pbio.1001642 . PMC 3754887. PMID 24013706 . ^ Maetzig T, Galla M, Baum C, Schambach A (2011). 「 ガンマレトロウイルスベクター:生物学、技術、応用」 . ウイルス . 3 (6): 677– 713. doi : 10.3390/v3060677 . PMC 3185771. PMID 21994751 . ^ a b c d e f 「ガンマレトロウイルス」 。 viralzone.expasy.org 。 SIB スイスバイオインフォマティクス研究所 。 2021 年 2 月 27 日 に取得 。 ^ a b Maetzig, T.; Galla, M.; Baum, C.; Schambach, A. (2011). 「ガンマレトロウイルスベクター:生物学、技術および応用」 . ウイルス . 3 ( 12): 617– 623. doi : 10.3390/v3060677 . PMC 3185771. PMID 21994751 . ^ a b Baig, FA; Mirza, T.; Hamid, A.; et al. (2017年9月). 「前立腺腺癌の管状変異体は異種指向性マウス白血病ウイルス関連ウイルス(XMRV)感染を保有している:前立腺癌のサブタイプにおける新たな知見」 . Turkish Journal of Urology . 43 (3): 268– 272. doi : 10.5152/tud.2017.85451 (2025年 7月1日非アクティブ). PMC 5562243. PMID 28861296 . {{cite journal }}: CS1 maint: DOIは2025年7月時点で非アクティブです(リンク )^ バルキネロ、J.アイクサーチ、H.ペレス・メルゴサ、M. (2004 年 10 月)。 「レトロウイルスベクター: 古いツールの新しい応用」。 遺伝子治療 。 11 (補足 1): S3 ~ S9。 土井 : 10.1038/sj.gt.3302363 。 PMID 15454951 。 ^ 「XMRVの起源が解明、ヒト疾患における役割の主張を覆す」 国立がん研究所 、 2011年5月31日、 2015年11月17日時点の オリジナルよりアーカイブ、 2015年 11月16日 閲覧。 ^ 「NCIのVinay K. Pathak氏によるレトロウイルスと疾患の関連性の「発見の撤回」について」 、 Science Watch 、Fast Breaking Papers、2012年、 2015年 11月16日 閲覧。 ^ Paprotka, Tobias; Delviks-Frankenberry, Krista A.; Cingöz, Oya; et al. (2011年7月1日). 「レトロウイルスXMRVの組換え起源」 . Science . 333 ( 6038): 97– 101. Bibcode : 2011Sci...333...97P . doi : 10.1126/science.1205292 . ISSN 0036-8075 . PMC 3278917. PMID 21628392 . EBSCOログイン経由^ a b Arias, Maribel; Fan, Hung (2014年4月9日). 「XMRVの物語:ヒト細胞に感染するがヒトウイルスではないウイルス」 . Emerging Microbes & Infections . 3 (4): e. doi : 10.1038/emi.2014.25 . PMC 4008767. PMID 26038516 . ^ Alberts, Bruce (2011年12月23日). 「撤回」 . Science . 334 (6063): 1636. Bibcode : 2011Sci...334.1636A . doi : 10.1126/science.334.6063.1636-a . PMID 22194552 . ^ 「種リスト: レトロウイルス科 」 。国際ウイルス分類委員会。 2025年 3月31日 閲覧 。 ^ 崔、J.;タチェジャン、M.ワン、L.他。 (2012年)。 「コウモリにおけるレトロウイルス相同体の発見: 哺乳類ガンマレトロウイルスの起源への影響 」 ウイルス学ジャーナル 。 86 (8): 4288–4293 。 土井 : 10.1128/JVI.06624-11 。 PMC 3318619 。 PMID 22318134 。 ^ Wang, L.; Yin, Q.; He, G.; Rossiter, SJ; Holmes, EC; Cui, J. (2013). 「絶滅したガンマレトロウイルスの鯨類への古代からの侵入」. Virology . 441 (1): 66– 69. doi : 10.1016/j.virol.2013.03.006 . PMID 23545142 . ^ a b c Flint, SJ; Enquist, LW; Racaniello, VR; Rall, GF; Skalka, AM (2015). Principles of Virology (4 ed.). Washington, DC: ASM Press. p. xxx . 2017年 11月7日 閲覧 。 ^ Tarlinton, RE (2012). 「コアラレトロウイルスの内因化の実態」. Witzany, G. (編). 『 ウイルス:生命活動に不可欠な因子 』. ドルドレヒト, ドイツ: Springer. pp. 283– 291. doi : 10.1007/978-94-007-4899-6_14 . ISBN 978-94-007-4898-9 。^ Stoye, JP (2006). 「コアラレトロウイルス:リアルタイムのゲノム侵入」 . ゲノム生物学 . 7 (11): 241. doi : 10.1186 / gb-2006-7-11-241 . PMC 1794577. PMID 17118218 . ^ アルファノ、ニッコロ;ミショー、ヨハン。モランド、セルジュ。アプリン、ケン。ツァンガラス、キリアコス。レーバー、ウルリケ。ファーブル、ピエール=アンリ。フィトリアーナ、ユリ。セミアディ、ゴノ。石田泰子;ヘルゲン、クリストファー M. (2016-09-15)。 「ウォレセア(インドネシア)のげっ歯類(Melomys burtoni subsp.)で内在性テナガザル白血病ウイルスが同定された」 。 ウイルス学ジャーナル 。 90 (18): 8169–8180 。 土井 : 10.1128/JVI.00723-16 。 ISSN 0022-538X 。 PMC 5008096 。 PMID 27384662 。 ^ Denner, Joachim; Young, Paul R (2013-10-23). 「コアラ の レトロウイルス:その特徴とコアラの寿命への影響」 . Retrovirology . 10 : 108. doi : 10.1186/1742-4690-10-108 . ISSN 1742-4690 . PMC 4016316. PMID 24148555 . ^ a b Stoye, Jonathan P (2006). 「コアラレトロウイルス:リアルタイムのゲノム侵入」 . ゲノム生物学 . 7 (11): 241. doi : 10.1186 / gb-2006-7-11-241 . ISSN 1465-6906 . PMC 1794577. PMID 17118218 . ^ a b Quigley, Bonnie L.; Ong, Vanissa A.; Hanger, Jonathan; Timms, Peter (2018-03-01). 「クイーンズランド州の野生コアラ集団への侵入と拡散におけるコアラレトロウイルスの分子ダイナミクスと伝播様式」 . Journal of Virology . 92 (5). doi : 10.1128/JVI.01871-17 . ISSN 0022-538X . PMC 5809739. PMID 29237837 . ^ Olagoke, O.; Quigley, BL; Eiden, MV; Timms, P. (2019-08-27). 「コアラレトロウイルス(KoRV)に対する抗体反応:KoRV-Aを保有するコアラにおけるKoRV-Bの存在下または非存在下」 . Scientific Reports . 9 (1): 12416. Bibcode : 2019NatSR...912416O . doi : 10.1038/ s41598-019-48880-0 . ISSN 2045-2322 . PMC 6711960. PMID 31455828 . ^ "Retroviridae" . www.uniprot.org . 2020年2月16日 閲覧。 ^ Hardy, WD; Hess, PW; MacEwen, EG; McClelland, AJ; Zuckerman, EE; Essex, M.; Cotter, SM; Jarrett, O. (1976年2月). 「自然環境におけるネコ白血病ウイルスの生物学」. Cancer Research . 36 (2 pt 2): 582– 588. ISSN 0008-5472 . PMID 175919 . ^ O'Connor, Thomas P.; Lawrence, John; Andersen, Philip; Leathers, Valerie; Workman, Erwin (2013-01-01). 「第8章 獣医診断における免疫測定法の応用」 . Wild, David (編). The Immunoassay Handbook (Fourth Edition) . Elsevier. pp. 623– 645. ISBN 978-0-08-097037-0 . 2020年2月16日 閲覧 。^ ウェストマン, マーク; ノリス, ジャクリーン; マリク, リチャード; ホフマン=レーマン, レジーナ; ハーヴェイ, アンドレア; マクラッキー, アリシア; パーキンス, マルティーヌ; スコフィールド, ドナ; マーカス, アラン; マクドナルド, マイク; ワード, マイケル (2019-05-31). 「 オーストラリアにおける飼い主およびグループ飼育されている保護猫における猫白血病ウイルス(FeLV)感染症の診断」 . ウイルス . 11 (6): 503. doi : 10.3390/v11060503 . ISSN 1999-4915 . PMC 6630418. PMID 31159230 . ^ 「ネコ白血病ウイルス」 コーネル 大学獣医学部 2017年10月11日 2020年2月18日 閲覧 。 ^ Vobis, M.; d'Haese, J.; Mehlhorn, H.; Mencke, N. (2003). 「電子リソースへのサインイン、シドニー大学図書館」. 寄生虫 学研究 . 91 (6): 467– 70. doi : 10.1007/s00436-003-0949-8 . PMID 14557874. S2CID 23898163 . ^ Bolin, Lisa L.; Ahmad, Shamim; Lobelle-Rich, Patricia A.; Ooms, Tara G.; Alvarez-Hernandez, Xavier; Didier, Peter J.; Levy, Laura S. (2013年10月). 「ネコ白血病ウイルス分離株FeLV-945の表面糖タンパク質は、ウイルス特有の長末端反復配列の有無にかかわらず、病原性変化の決定因子となる」 . Journal of Virology . 87 (19): 10874– 10883. doi : 10.1128 / JVI.01130-13 . ISSN 0022-538X . PMC 3807393. PMID 23903838 . ^ Chang, Zongli; Pan, Judong; Logg, Christopher; Kasahara, Noriyuki; Roy-Burman, Pradip (2001年9月). 「緑色蛍光タンパク質レポーター標識複製能を有するネコ白血病ウイルスサブグループA(FeLV-A)は、親株FeLV-Aと同様のin vitro生物学的特性を示す」 . Journal of Virology . 75 (18): 8837– 8841. doi : 10.1128/JVI.75.18.8837-8841.2001 . ISSN 0022-538X . PMC 115128. PMID 11507228 . ^ a b Łopata, Krzysztof; Wojdas, Emilia; Nowak, Roman; Łopata, Paweł; Mazurek, Urszula (2018-04-11). 「豚内因性レトロウイルス(PERV)– ヒト細胞へ の レトロウイルス感染リスクを考慮した分子構造と複製戦略」 . Frontiers in Microbiology . 9 : 730. doi : 10.3389/fmicb.2018.00730 . ISSN 1664-302X . PMC 5932395. PMID 29755422 . ^ a b Denner, Joachim (2016-08-03). 「豚内因性レトロウイルス(PERV) の 活性はどの程度か?」 . ウイルス . 8 (8): 215. doi : 10.3390/v8080215 . ISSN 1999-4915 . PMC 4997577. PMID 27527207 . ^ クレンゲル、A.;カトリ、V.メリ、M。他。 (2015年)。 「放し飼いおよび飼育されたナミビアチーターにおけるガンマレトロウイルス特異的抗体」 。 臨床およびワクチン免疫学 。 22 (6): 611–617 。 土井 : 10.1128/cvi.00705-14 。 PMC 4446404 。 PMID 25809630 。
外部リンク