エンドウ豆のアスコヒタ病
エンドウ豆のアスコヒタ病
エンドウの葉に生じたAscochyta pinodesによる壊死性病変
一般名エンドウのアスコヒタ病、アスコヒタ疫病、マイコスファエレラ疫病、アスコヒタ株腐病、アスコヒタ枯死病、サヤ斑点病
病原体アスコヒタ・ピノデス、アスコヒタ・ピノデラ、アスコヒタ・ピシ
宿主エンドウ
EPPOコードマイコピ
第2EPPOコードPHOMMP
処理衛生管理、輪作、播種時期の変更、化学的防除、生物学的防除、耐性品種の開発

アスコヒタ疫病は世界中で発生しており、経済的に大きな影響を及ぼす可能性があります。エンドウ（Pisum sativum）のアスコヒタ疫病複合には、3種類の菌類が関与しています。[ 1 ] Ascochyta pinodes（有性生殖期：Mycosphaerella pinodes）はMycosphaerella疫病を引き起こします。[ 2 ] [ 3 ] Ascochyta pinodella（シノニム：Phoma medicaginis var. pinodella）はアスコヒタ株腐病を引き起こし、Ascochyta pisiはアスコヒタ疫病および莢斑病を引き起こします。[ 3 ] [ 4 ] 3種類の菌類のうち、Ascochyta pinodesが最も重要です。[ 5 ]これらの病気は、湿気の多い条件下で発生しやすく、放置すると最大50％の収量損失を引き起こす可能性があります。[ 2 ]エンドウのアスコヒタ疫病を防除する最良の方法は、衛生管理、輪作、播種時期の変更などによって一次感染源の量を減らすことです。化学的防除、生物学的防除、耐性品種の開発といった他の方法も、アスコヒタ病を効果的に防除するために用いられる場合があります。[ 3 ]

宿主と症状

アスコヒタ疫病複合体は、エンドウ（Pisum sativum）だけでなく、ヒヨコマメ、レンズマメ、ソラマメなど多くのマメ科植物にも影響を与えます。[ 6 ]エンドウのアスコヒタ病は3つの異なる病原体によって引き起こされますが、症状は互いに比較的類似しているため、診断が困難です。しかし、真菌病原体間には若干の違いがあります

ミコスファエレラ疫病（M. pinodes）

M. pinodesの子嚢胞子は葉に感染を引き起こし、葉の裏側に多数の小さな紫色の斑点が現れることで識別できます。乾燥した状態では、これらの斑点は小さいままで、境界がはっきりしません。[ 2 ] [ 3 ]しかし、湿潤した状態では、紫色の斑点は拡大し、境界がはっきりした茶黒色の病変に変化します。これらの病変は拡大して融合し、完全に枯れた葉を形成することもあります。感染した葉は枯れますが、植物に付いたままになります。[ 3 ]感染した葉の付着点から、紫がかった茶色の茎病変が生成されます。これらの病変は付着点から上下に広がります。時間が経つにつれて、これらの病変は次第に長くなり、しばしば融合して植物の茎を完全に包み込みます。これにより、植物の下半分が青黒く見えます。M. pinodes が花に感染すると、花に小さな点状の病変が現れ、花または小さな鞘が落ちます。これは、生き残る莢の数に大きな影響を与え、種子生産を制限します。M . pinodesに感染した種子は症状を示さない場合もありますが、症状が現れた場合は、種子が縮み、暗褐色に変色することがあります。[ 3 ]感染した種子を植えると、苗が株腐れを起こす可能性があります。重度の感染は、若い植物を枯死させたり、成長を阻害したりする可能性があり、成熟した植物では、下葉がすべて老化し、植物の基部の茎が黒ずむ可能性があります。[ 3 ]

アスコヒタ足腐病（P. pinodella）

P. pinodellaの症状はM. pinodesによるものと非常に似ていますが、それほど深刻ではありません。P . pinodellaは葉、茎、莢へのダメージが少ない傾向があります。[ 2 ] [ 3 ]一方、根腐れは通常より深刻で、土壌線で茎に感染し、地下にまで広がり、側根の枯死を引き起こすことがよくあります。[ 3 ] [ 4 ]

アスコヒタ疫病および莢斑病（A. pisi）

A. pisiは、わずかに窪んだ黄褐色の病変で識別され、その縁は暗褐色です。葉と莢の病変は円形で、茎の病変は細長くなります。[ 2 ]しばしば小さな黒色の分生子が見られます。A . pisiは、 M. pinodesやP. pinodellaに比べ、植物の根元を侵したり、根腐れを引き起こしたりすることは稀です。[ 3 ]

診断

どの病原体が病気を引き起こしているかを特定するために、特定の技術を使用できます。株を区別するための標準的な技術の1つは顕微鏡検査です。顕微鏡下では、M. pinodesは偽子殻の存在によって診断できます。P . pinodellaは、生成される分生子の大きさによって診断できます。P . pinodellaは、M. pinodesやA. pisiよりも小さな分生子を生成します。A. pisiは分生子の色によって診断できます。オートミール寒天培地上で生成されるM. pinodesとP. pinodellaの淡い色の淡黄褐色の胞子塊と比較して、A. pisiの胞子塊はニンジンのような赤色です。[ 3 ]

その他の診断技術としては、血清学的検査、アイソザイム分析、制限酵素断片長多型（RFLP）、ランダム増幅多型DNA（RAPD ）検査、モノクローナル抗体の使用などがある。[ 3 ]

病気のサイクル

エンドウ豆の子嚢菌類による疫病は、子嚢菌類によって引き起こされます。この菌類には無性生殖期と有性生殖期があります。[ 7 ]子嚢菌類の病原菌は異体性であり、有性生殖期を形成するために適合する2つの菌糸株を必要とします。 子嚢菌類の分生子は土壌、種子、または感染した植物の残骸の中で越冬します。分生子は宿主組織と接触して発芽し、春に気孔から侵入して一次感染源となります。病変はすぐに葉に現れます。次に、菌糸が成長して洋ナシ形の分生子を形成し、最終的に分生子を放出します。分生子は雨水によって植物や種子に再感染し、これが二次感染源となります。適合する菌糸は融合して二核菌糸体を形成し、子嚢を持つ偽子嚢殻を形成することもある。これらはまた、感染した植物の残骸の中で越冬し、春に子嚢胞子を放出し、風を介して一次接種源として新しい宿主に感染する。[ 3 ] 2つの交配型の存在は、組み換えによる遺伝的変異に寄与する。これにより、病原体は以前は抵抗性であった植物の品種で発生を引き起こすのに役立っている。通常、Ascochyta属の種は宿主特異的であり、A. fabae、A. lentis、A. pisi、およびA. viciae-villosaeはそれぞれソラマメ、レンズマメ、エンドウ豆、ヘアリーベッチに感染する。[ 8 ]つまり、各種はそれぞれの宿主にのみ症状を引き起こし、他の宿主には引き起こさない。

環境

生育期に降雨量や高湿度の地域は、アスコヒタ疫病の発生に最も適しています。[ 9 ]作物の林冠が閉じると、密生した植物が乾燥した空気の林冠への流入を妨げるため、感染が激しくなることがよくあります。ちなみに、病気の症状は、最初は植物の根元に最も多く現れ、時間とともに上部に広がります。[ 10 ]アスコヒタ疫病は、北緯26度から北緯45度の緯度範囲で最も多く発生します。熱帯性気候は病気の進行を制限します。北緯26度から北緯45度の緯度範囲の条件は、気温が適度で湿度が高く、露や雨によって植物の表面が湿っているため、この病気が発生しやすいです。[ 11 ]アスコヒタ菌は20℃以下で最も速く成長し、20℃を超えると成長が制限され始めます。[ 9 ]有性子嚢胞子は風によって長距離を運ばれるため、アスコヒタ疫病に対する輪作の有効性を低下させる。無性子嚢胞子は雨水の飛沫によって短距離を移動し、新たな宿主に到達する。

管理

  1. 輪作：土壌やエンドウ豆の残渣から最大3年間感染が発生する可能性があるため、[ 12 ]感染リスクを軽減する効果的な方法は、同じ圃場で3～4年に1回以上エンドウ豆を植えないことです。また、エンドウ豆を植える圃場の場所を毎年変更し、できるだけ離れた場所に植えることも有益です。これにより、枯死病などのさまざまな病気を抑制できます。[ 2 ]
  3. 残渣管理：耕起を全く行わない、あるいは最小限に抑える耕起は、感染を助長することはないようです。しかし、コンバイン作業中の藁切りや、エンドウ豆の残渣（残渣）を土壌表面に散布するためのすき込み作業などの残渣管理は、残渣の分解を促進し、ひいては病害蔓延のリスクを低減するのに役立ちます。[ 2 ]
  5. 品種の選択： A. pinodes枯死病に対する耐性品種は、病変による茎の倒伏に対してかなり耐性があり、収量損失が少ないように開発されています。[ 12 ]半葉品種を植えることで湿度を下げることができ、感染を防ぐことができます。[ 13 ]
  7. 農業経済学：エンドウ豆の種子を春に植えると、収量が高くなる傾向があります。種子を土壌に深く植えすぎたり、寒い時期に植えたりすると、土壌伝染性および種子伝染性の病気にかかりやすくなり、収量損失が増加する傾向があります。作物を直立させ、「倒伏度」の高い作物を選ぶことで、アスコヒタなどの病気の蔓延を抑えることができます。窒素過剰の圃場を避けることも、エンドウ豆の倒伏を減らすのに役立ちます。[ 2 ]
  9. 種子の品質：認定された研究所で発芽率と病害レベルを測定することで、収穫量を向上させることができます。種子を培地に播種し、菌の感染率を測定します。10%未満が推奨されます。しかし、病原菌にとって好ましい環境条件などにより感染が容易に増加する可能性があるため、種子には殺菌剤処理が効果的です。[ 2 ]
  11. 種子処理：エンドウ豆の種子伝染性アスコヒタから保護する種子処理製品がいくつかあります。Apron Maxx RTA®とVitaflo 280®です。[ 2 ]
  13. 偵察と葉面殺菌剤: 感染した植物に施用する殺菌剤の量を決定するには、成長段階に応じた初期症状と病気の進行状況の偵察が重要です。開花期に症状が植物の冠の下部 3 分の 1 より下に広がっている場合、収量損失のリスクは低く、殺菌剤処理は不要です。植物の冠の下部 3 分の 1 の半分が感染して中央部まで広がっており、天気予報が雨が多く湿気が多く、収量が多いため殺菌剤のコストに見合う場合は、殺菌剤の使用が正当化されます。殺菌剤の散布が作物の収量に利益をもたらすかどうかにかかわらず、少なくとも種子の品質を保護するために散布することを選択する人もいます。エンドウの Ascochyta枯死病を防除する非全身性保護殺菌剤には、 Bravo 500 ®、[ 14 ] Headline EC ®、Lance®、およびQuadris®があります。開花初期に施用するのが理想的である。[ 2 ]

重要性

ミコスファエレラ疫病は最も一般的なアスコヒタ病であり、アイルランド、アメリカ合衆国、モロッコ、イラン、アルゼンチン、オーストラリア、スペインなど、エンドウ豆の栽培地域全体で発生しています。[ 7 ]感染したエンドウ豆の平均収量損失は、病気を促進または阻害する環境条件に応じて10％から50％の範囲になります。[ 13 ]

参照

参考文献

  1. ^サスカチュワン州政府. 「エンドウ豆のアスコヒタ枯死」. 2012年9月16日時点のオリジナルよりアーカイブ。2012年10月20日閲覧。
  2. ^ a b c d e f g h i j kサスカチュワン州政府。「フィールドエンドウの子嚢病病」。2012 年 9 月 16 日のオリジナルからアーカイブ。2012 年10 月 20 日に取得。
  3. ^ a b c d e f g h i j k l m Bretag, TW; P. Keane; T. Price (2006). 「エンドウ豆におけるアスコヒタ疫病の疫学と防除：レビュー」.オーストラリア農業研究誌. 57 (8): 883– 902. doi : 10.1071/AR05222 .
  4. ^ a bブラウン、レベッカ. 「エンドウ豆の病気」 . 2013年3月27日時点のオリジナルよりアーカイブ。2012年10月20日閲覧。
  5. ^アリ、M.ニッチェ、L.クラウス、M. Cameron, B (1978)、「Ascochyta pinodes、A. pisiおよびPhoma medicaginis var. pinodellaの病型に対する耐性のためのエンドウ豆系統の選択」、Australian Journal of Agriculture Research、29 (4): 841–9、doi : 10.1071/ar9780841
  6. ^ Muehlbauer, Fred; W. Chen (2007年7月). 「冷涼期食用マメ科植物のアスコヒタ疫病に対する抵抗性」 . European Journal of Plant Pathology . 119 : 135–141 . doi : 10.1007/s10658-007-9180-2 . S2CID 22915431 . 
  7. ^ a b Peever, TL; MP Barve; LJ Stone; WJ Kaiser (2007). 「マメ科植物族CicereaeとVicieaeにおける野生および栽培宿主に感染するAscochyta属菌類の進化的関係」Mycologia . 1. 99 (1): 59– 77. doi : 10.3852/mycologia.99.1.59 . PMID 17663124 . 
  8. ^ Hernandez-Bello, MA; MI Chilvers; H. Akamatsu; TL Peever (2006). 「Viciae族およびCicerae族のマメ科植物に感染するAscochyta属菌の宿主特異性と種間雑種の病原性」 . Phytopathology . 96 (10): 1148–56 . doi : 10.1094/PHYTO-96-1148 . PMID 18943504 . 
  9. ^ a b Kaiser, Walker J. (1973). 「 Ascochyta rabieiの成長、胞子形成、病原性、および生存に影響する因子」Mycologia . 65 ( 2): 444–57 . doi : 10.2307/3758115 . JSTOR 3758115. PMID 4712318 .  
  10. ^ 「Prairie Soils and Crops Journal」（PDF） 。2015年11月21日時点のオリジナル（PDF）からアーカイブ。
  11. ^ Jhorar, Om P. (1996).ヒヨコマメのアスコヒタ疫病に関する作物・環境・病気の相互作用に関する研究. パンジャブ農業大学. pp.  1– 80.
  12. ^ a b Gossen, BD; SF Hwang; RL Conner; KF Chang (2011). 「カナダ西部におけるエンドウ豆のアスコヒタ疫病複合病の管理」(PDF) . Prairie Soils & Crops Journal . 4 : 135– 141. 2012年9月16日時点のオリジナル(PDF)からアーカイブ。
  13. ^ a b「エンドウ豆のアスコヒタ疫病の原因は何か？」 20/20 Seed Labs Inc. 2016年3月4日時点のオリジナルよりアーカイブ。2012年10月20日閲覧。
  14. ^ 「Bravo 500、製品ラベル、殺菌剤、シンジェンタ農薬」シンジェンタ、2023年8月11日。
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