原癌遺伝子チロシンタンパク質キナーゼ Src

Mammalian protein found in humans
SRC
利用可能な構造
PDBオーソログ検索:PDBe RCSB
識別子
別名SRC、ASV、SRC1、c-p60-Src、SRCプロトオンコジーン、非受容体型チロシンキナーゼ、THC6
外部IDOMIM : 190090; MGI : 98397; HomoloGene : 21120; GeneCards : SRC; OMA : SRC - オーソログ
EC番号2.7.10.2
相同遺伝子
ヒトマウス
Entrez
アンサンブル
ユニプロット
RefSeq (mRNA)

NM_005417
NM_198291

NM_001025395
NM_009271

RefSeq(タンパク質)

NP_005408
NP_938033

NP_001020566
NP_033297

場所(UCSC)20番地: 37.34 – 37.41 MB2番目の文字: 157.42 – 157.47 Mb
PubMed検索[3][4]
ウィキデータ
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プロトオンコゲンチロシンタンパク質キナーゼSrcはプロトオンコゲンc-Src、あるいは単にc-Src (細胞性Src、サルコーマの略称であるため「サーク」と発音)とも呼ばれ、ヒトではSRC遺伝子によってコードされる非受容体チロシンキナーゼタンパク質である。Srcファミリーキナーゼファミリーに属し、ラウス肉腫ウイルスのv-Src(ウイルス性Src)遺伝子に類似している。SH2ドメインSH3ドメイン、およびチロシンキナーゼドメインを含む。この遺伝子には、同じタンパク質をコードする2つの転写バリアントが見つかっている。[5]

c-Srcは他のチロシンキナーゼの特定のチロシン残基をリン酸化します。c-Srcは胚発生と細胞増殖の調節に役割を果たします。c-Srcの活性レベルの上昇は、他のシグナルを促進することで癌の進行と関連している可能性が示唆されています。[6] c-Srcの変異は、大腸癌の悪性進行に関与している可能性があります。c-Srcは、 c-SrcのC末端をリン酸化してSrcの酵素活性を負に制御する酵素であるCSK(C末端Srcキナーゼ)と混同しないでください。

c-Srcはもともとアメリカの科学者J・マイケル・ビショップハロルド・E・ヴァーマスによって発見され、彼らは1989年のノーベル生理学・医学賞を受賞しました。[7]

発見

1979年、J・マイケル・ビショップハロルド・E・ヴァーマスは、正常なニワトリがv-Srcと構造的に近縁の遺伝子を持っていることを発見した[8]正常な細胞遺伝子はc-src(細胞-src)と呼ばれた。[9]この発見により、がんは外来物質(ウイルス遺伝子)によって引き起こされるというモデルから、細胞内に通常存在する遺伝子ががんを引き起こす可能性があるというモデルへと、がんに関する当時の考え方が変わった。ある時点で、祖先のウイルスが誤って細胞宿主のc-Src遺伝子を取り込んだと考えられている。最終的に、この正常な遺伝子はラウス肉腫ウイルス内で異常に機能するがん遺伝子に変異した。このがん遺伝子がニワトリに再び導入されると、がんを引き起こす可能性がある。

構造

Srcファミリーキナーゼには9つのメンバーがあります:c-Src、YesFynFgr、Yrk、LynBlkHckLckです。[10]これらのSrcファミリーメンバーの発現は、すべての組織および細胞型で同じではありません。Src、Fyn、Yesはすべての細胞型で普遍的に発現していますが、その他は一般的に造血細胞に見られます。[11] [12] [13] [14]

c-Srcは6つの機能領域から構成されています:Src相同性4ドメイン(SH4ドメイン)、固有領域、SH3ドメインSH2ドメイン、触媒ドメイン、短い調節テール。[15] Srcが不活性な場合、527番目のリン酸化チロシン基がSH2ドメインと相互作用し、SH3ドメインが柔軟なリンカードメインと相互作用するのを助け、それによって不活性ユニットがしっかりと結合した状態を維持します。c-Srcが活性化されると、チロシン527の脱リン酸化が引き起こされます。これはタンパク質ドメインダイナミクスを介して長距離アロステリーを誘導し、構造を不安定化させ、SH3、SH2、キナーゼドメインの開口と残基チロシン416の自己リン酸化をもたらします。[16] [17] [18]

c-Srcは、接着受容体受容体型チロシンキナーゼGタンパク質共役受容体、サイトカイン受容体など、多くの膜貫通タンパク質によって活性化されます。多くの研究は受容体型チロシンキナーゼに焦点を当てており、その例としては、血小板由来成長因子受容体(PDGFR)経路や上皮成長因子受容体(EGFR)などが挙げられます。

Srcには少なくとも3つの柔軟なタンパク質ドメインが含まれており、ミリストイル化と相まって膜への付着を媒介し、細胞内局在を決定することができる。[19]

機能

このプロトオンコゲンは、胚発生と細胞増殖の調節に役割を果たす可能性がある

SRCが活性化されると、生存、血管新生増殖、浸潤経路が促進されます。また、局所脳虚血再灌流後の血管新生因子と血管透過性も調節します[20] [21]。また、脳内出血後のマトリックスメタロプロテアーゼ-9の活性も調節します[22] 。

がんにおける役割

c-Src経路の活性化は、結腸、肝臓、肺、乳房、膵臓の腫瘍の約50%で観察されています。[23] c-Srcの活性化は、生存、血管新生、増殖、浸潤経路の促進につながるため、がんにおける腫瘍の異常な増殖が観察されます。一般的なメカニズムは、c-Srcの活性の増加または過剰発現につながる遺伝子変異があり、c-Srcの恒常的な活性化につながるというものです

大腸がん

c-Srcの活性は大腸がんにおいて最もよく特徴付けられています。研究者らは、前癌性ポリープにおけるSrcの発現が正常粘膜の5~8倍高いことを示しています。[24] [25] [26] c-Srcレベルの上昇は、腫瘍の進行期、腫瘍の大きさ、および腫瘍の転移能と相関関係があることも示されています。[27] [28]

乳がん

EGFRはc-Srcを活性化し、EGFもc-Srcの活性を高めます。さらに、c-Srcの過剰発現はEGFRを介したプロセスへの反応を高めます。つまり、EGFRとc-Srcは互いの効果を高めます。ヒト乳がん組織では、正常組織と比較してc-Srcの発現レベルが上昇していることが認められました。[29] [30] [31]

erbB2としても知られるヒト上皮成長因子受容体2(HER2)の過剰発現は、乳がんの予後不良と相関している。[32] [33]このように、c-Srcは乳がんの腫瘍進行において重要な役割を果たしている。

前立腺がん

SrcファミリーキナーゼのメンバーであるSrc、Lyn、Fgrは、正常前立腺細胞と比較して悪性前立腺細胞で高発現しています。[34]原発性前立腺細胞をLynの阻害剤であるKRX-123で処理すると、in vitroでの細胞の増殖、遊走、浸潤能が減少しました。[35]したがって、チロシンキナーゼ阻害剤の使用は、前立腺がんの進行を抑制する可能性のある方法です

薬剤ターゲットとして

c-Srcチロシンキナーゼ(および関連チロシンキナーゼ)を標的とするチロシンキナーゼ阻害剤が数多く治療目的で開発されている。[36]注目すべき例としては、慢性骨髄性白血病(CML)およびフィラデルフィア染色体陽性(PH+)急性リンパ性白血病(ALL)の治療薬として承認されているダサチニブが挙げられる。 [37]ダサチニブは、非ホジキンリンパ腫、転移性乳がん、前立腺がんの治療薬としても臨床試験が行われている。臨床試験中のその他のチロシンキナーゼ阻害剤としては、ボスチニブ[38]バフェチニブサラカチニブ(AZD-0530)、XLl-999、KX01、XL228などがある。[6] HSP90阻害剤NVP-BEP800はSrcチロシンキナーゼの安定性とT細胞およびB細胞急性リンパ芽球性白血病の増殖に影響を及ぼすことが報告されている。[39]

相互作用

Src(遺伝子)は、以下のシグナル伝達経路と相互作用することが示されています

追加画像

アポトーシスに関与するシグナル伝達経路の概要
脂質
結合











リン












リン












SH3
スプライシング
変異














SH2
バリアント






リンチロシン















防水
ポケット
























バリアント






チロシンキナーゼ

活性部位










SH
3 / SH 2ドメインインターフェース























A
T
P
プロトン
受容













アク
ティベーションループ














リンチロシン














S-ニトロソシステイン

















ホスホトレオニン















リンチロシン














リンチロシン














P
S
/
P
T
/
P
S

(
CD
K 5 )



写真F A K 2 /自動



















スワップ

ダイマー/ペプチド結合
























自動
禁止装置



























上段:    βストランド領域

  水素結合ターン   らせん領域

部位 2 2 脂質結合
部位 17 17 ホスホセリン
部位 35 35 ホスホセリン
部位 69 69 ホスホセリン
部位 74 74 ホスホトレオニン
部位 75 75 ホスホセリン; CDK5による
領域 87 93 βストランド領域
領域 88 143 SH3
部位 88 88 交換された二量体界面 [ポリペプチド結合]
部位 93 93 ペプチドリガンド結合部位[ポリペプチド結合]
領域 99 102 βストランド領域
領域 110 114 βストランド領域
領域 117 117 スプライシングバリアント
領域 118 126 βストランド領域
領域 127 129 水素結合ターン
領域 132 136 βストランド領域
領域 137 139 らせん領域
領域 140 142 βストランド領域
領域 146 148 らせん領域
領域 147 247 SH2
領域 152 154 βストランド領域
部位 158 158 自己阻害部位[ポリペプチド結合]
部位 158 158 リン酸化チロシン結合ポケット[ポリペプチド結合]
領域 158 165 らせん領域
領域 167 170 βストランド領域
領域 174 179 βストランド領域
領域 176 176 バリアント
領域 181 183 βストランド領域
領域 187 195 βストランド領域
部位 187 187 ホスホチロシン(類似性による)
領域 196 198 水素結合ターン
領域 199 209 βストランド領域
部位 205 205 疎水性結合ポケット [ポリペプチド結合]
領域 211 213 βストランド領域
領域 215 218 βストランド領域
領域 221 225 βストランド領域
領域 226 233 らせん領域
領域 237 237 バリアント
領域 240 242 βストランド領域
領域 256 259 βストランド領域
領域 267 269 らせん領域
領域 270 519 チロシンキナーゼ
領域 270 278 βストランド領域
部位 276 276 活性部位(ATP結合)
領域 283 289 βストランド領域
部位 290 290 SH3/SH2ドメイン界面 [ポリペプチド結合]
領域 290 292 水素結合ターン
領域 293 299 βストランド領域
部位 298 298 ATP
領域 302 304 水素結合ターン
領域 307 319 らせん領域
領域 328 332 βストランド領域
領域 334 336 βストランド領域
領域 338 341 βストランド領域
領域 349 353 らせん領域
領域 355 358 らせん領域
領域 363 382 らせん領域
部位 389 389 プロトン受容体
領域 392 394 らせん領域
領域 395 397 βストランド領域
領域 399 401 らせん領域
領域 403 405 βストランド領域
部位 406 406 活性化ループ(Aループ)
領域 410 413 らせん領域
領域 417 420 らせん領域
部位 419 419 ホスホチロシン; 自己触媒により; 交互
部位 419 419 ホスホチロシン; FAK2による; 代替(類似性による)
領域 423 426 水素結合ターン
領域 429 431 らせん領域
領域 434 439 らせん領域
部位 439 439 ホスホチロシン
領域 444 459 らせん領域
領域 460 462 水素結合ターン
領域 471 479 らせん領域
領域 492 501 らせん領域
部位 501 501 S-ニトロソシステイン(類似性による)
領域 506 508 らせん領域
部位 511 511 ホスホトレオニン
領域 512 520 らせん領域
領域 521 523 水素結合ターン
部位 522 522 ホスホチロシン
部位 530 530 ホスホチロシン;CSKによる

参考文献

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