MMP3

MMP3
利用可能な構造
PDBオーソログ検索: PDBe RCSB
識別子
エイリアスMMP3、CHDS6、MMP-3、SL-1、STMY、STMY1、STR1、マトリックスメタロペプチダーゼ3
外部IDOMIM : 185250 ; MGI : 97010 ; HomoloGene : 20545 ; GeneCards : MMP3 ; OMA : MMP3 - オルソログ
EC番号3.4.24.17
オーソログ
人間ねずみ
エントレズ
アンサンブル
ユニプロット
RefSeq (mRNA)

NM_002422

NM_010809

RefSeq(タンパク質)

NP_002413

NP_034939

場所(UCSC)11番地: 102.84 – 102.84 Mb9章: 7.45 – 7.46 Mb
PubMed検索[ 3 ][ 4 ]
ウィキデータ
人間の表示/編集マウスの表示/編集
ストロメリシン1
識別子
EC番号3.4.24.17
CAS番号79955-99-0
データベース
インテンズIntEnzビュー
ブレンダブレンダエントリー
エクスパスNiceZymeビュー
ケッグKEGGエントリー
メタサイクル代謝経路
プリアモスプロフィール
PDB構造RCSB PDB PDBe PDBsum
検索
PMC記事
パブメッド記事
NCBIタンパク質

ストロメリシン-1は、マトリックスメタロプロテアーゼ-3(MMP-3)としても知られ、ヒトではMMP3遺伝子によってコードされる酵素です。MMP3遺伝子は、染色体11q22.3に局在するMMP遺伝子群の一部です。[ 5 ] MMP-3の推定分子量は54 kDaです。[ 6 ]

関数

マトリックスメタロプロテアーゼ(MMP )ファミリーのタンパク質は、細胞外マトリックスタンパク質の分解、胚発生や生殖などの正常な生理過程における組織リモデリング、そして関節炎や腫瘍転移などの疾患過程に関与しています。ほとんどのMMPは不活性なプロタンパク質として分泌され、細胞外プロテアーゼによって分解されて活性化されます。[ 7 ]

MMP-3酵素は、II型、III型、IV型、IX型、X型コラーゲンプロテオグリカン、フィブロネクチンラミニンエラスチンを分解します。[ 8 ] [ 9 ] [ 10 ]さらに、MMP-3はMMP-1MMP-7MMP-9などの他のMMPを活性化することもできるため、MMP-3は結合組織のリモデリングに不可欠です。[ 11 ]この酵素は、創傷修復、アテローム性動脈硬化の進行、腫瘍の発生にも関与していると考えられています。

MMP3は細胞外空間での古典的な役割に加えて、細胞核に入り込んで転写を制御することもできる。[ 12 ]

遺伝子制御

MMP3自体は細胞の核内に入り込み、CTGF/CCN2遺伝子などの標的遺伝子を制御することができる。[ 12 ]

MMP3の発現は主に転写レベルで制御されており、遺伝子のプロモーターは成長因子サイトカイン、腫瘍プロモーター、および癌遺伝子産物などのさまざまな刺激に反応します。[ 13 ] MMP3遺伝子のプロモーターにおける多型は1995年に初めて報告されました。[ 14 ]この型は転写開始部位を基準として位置-1171にあるアデノシン数の変異によって引き起こされ、一方のアレルは5つのアデノシン(5A)を持ち、もう一方のアレルは6つのアデノシン(6A)を持ちます。in vitroプロモーター機能解析では、5Aアレルは6Aアレルと比較してプロモーター活性が高いことが示されました。[ 11 ]さまざまな研究で、5Aアレルを持つ人は急性心筋梗塞腹部大動脈瘤など、MMP発現の増加に起因する疾患に対する感受性が高いことが示されています。[ 15 ] [ 16 ]

一方、6Aアレルは、進行性冠動脈アテローム性動脈硬化症など、6Aアレルのプロモーター活性が低いためにMMP-3発現が不十分な疾患と関連することがわかっている。[ 11 ] [ 17 ] [ 18 ] -1171 5A/6A変異体も口唇裂および口蓋裂などの先天異常と関連しており、口唇裂/口蓋裂の人は対照群よりも有意に多くの6A/6A遺伝子を呈していた。[ 19 ]最近、MMP3遺伝子は、対照群と比較して口唇裂および口蓋裂の人ではダウンレギュレーションされていることが示され、 [ 20 ]口唇裂/口蓋裂が不十分または欠陥のある胚組織リモデリングから生じる疾患であるという性質を強化している。

構造

マトリックスメタロプロテアーゼの一般構造。

MMPファミリーのほとんどのメンバーは、構造的観点から、3つの基本的かつ特徴的で、よく保存されたドメインに分類されます。アミノ末端プロペプチド、触媒ドメイン、そしてカルボキシ末端のヘモペキシン様ドメインです。プロペプチドは約80~90個のアミノ酸から構成され、システイン残基は側鎖のチオール基を介して触媒亜鉛原子と相互作用します。プロペプチドには高度に保存された配列(. . .PRCGXPD. . .)が存在します。MMPファミリーのすべてのメンバーは潜在型で産生されるため、プロペプチドをタンパク質分解によって除去すると、チモーゲン活性化 が起こります。

触媒ドメインには、様々な残基に配位した2つの亜鉛イオンと少なくとも1つのカルシウムイオンが含まれています。2つの亜鉛イオンのうち1つは活性部位に存在し、MMPの触媒プロセスに関与しています。2つ目の亜鉛イオン(構造亜鉛とも呼ばれる)とカルシウムイオンは、触媒ドメイン内に触媒亜鉛から約12Å離れた位置に存在します。触媒亜鉛イオンはMMPのタンパク質分解活性に不可欠であり、触媒亜鉛と配位する3つのヒスチジン残基はすべてのMMP間で保存されています。触媒ドメイン内の2つ目の亜鉛イオンとカルシウムイオンの役割についてはほとんど解明されていませんが、MMPは構造亜鉛イオンとカルシウムイオンに対して高い親和性を持つことが示されています。

TIMP-1(青)とMMP-3(赤)の複合体。Cys1(緑)のTIMP-1が触媒亜鉛(紫)にキレート結合しているのがわかる。カルシウムイオン(黄)も示されている。PDB 1UEAのPyMOLレンダリングに基づく。簡略化のため、対応するTIMP-1と複合体を形成しているもう一方のMMP-3モノマーは示していない。

MMP-3の触媒ドメインは、組織メタロプロテアーゼ阻害剤(TIMP)によって阻害される。TIMPのN末端フラグメントは、ペプチド基質が結合するのと同様に、活性部位の溝に結合する。TIMPのCys1残基は触媒亜鉛とキレート化し、触媒グルタミン酸残基(Glu202、以下のメカニズムを参照)のカルボキシル酸素の1つと水素結合を形成する。これらの相互作用により、酵素の機能に不可欠な亜鉛結合水分子が酵素から離脱する。水分子の喪失とTIMPによる活性部位の遮断により、酵素は不活性化される。[ 21 ]

MMPのヘモペキシン様ドメインは高度に保存されており、血漿タンパク質ヘモペキシンと配列相同性を示す。ヘモペキシン様ドメインは、基質結合、および/または特異的MMPタンパク質阻害剤ファミリーである組織メタロプロテアーゼ阻害剤(TIMP)との相互作用において機能的役割を果たすことが示されている。[ 22 ]

機構

MMP-3の反応機構は、すべてのマトリックスメタロプロテアーゼに見られるより大きなテーマのバリエーションである。活性部位では、水分子がグルタミン酸残基(Glu202)と触媒ドメインに存在する亜鉛イオンの1つに配位する。まず、配位した水分子がペプチド基質の切断可能な炭素に求核攻撃を行い、同時にグルタミン酸が水分子からプロトンを引き抜く。引き抜かれたプロトンは、切断可能なアミドの窒素によってグルタミン酸から除去される。これにより、亜鉛原子に配位した四面体gem-ジオラート中間体が形成される。[ 23 ]アミド生成物が活性部位から放出されるためには、切断可能なアミドが配位した水分子から2つ目のプロトンを引き抜かなければならない。[ 24 ]あるいは、サーモリシン(別のメタロプロテアーゼ)では、アミド生成物が中性(R-NH 2)型で放出されることが示されている。[ 25 ] [ 26 ]水分子が亜鉛イオンを攻撃してカルボキシル生成物を置換した後にカルボキシル生成物が放出される。[ 27 ]カルボキシル生成物の放出が反応の律速段階であると考えられている。[ 26 ]

この機構に直接関与する水分子に加えて、MMP-3活性部位には2つ目の水分子が関与している可能性が示唆されている。この補助的な水分子は、gem-ジオレート中間体および遷移状態の形成における活性化エネルギーを低下させることで、それらを安定化させると考えられている。[ 23 ] [ 28 ]これは、以下の機構と反応座標図に示されている。

補助的な水分子を用いたMMP-3の触媒機構。示されている電荷は形式電荷である。

疾患の関連性

MMP-3 は、血液脳関門(BBB)を破壊することで、外傷性脳損傷(TBI)の影響を悪化させることに関係していると言われています。脳が外傷を受け炎症が始まると、脳内での MMP 産生が増加することが様々な研究で示されています。[ 29 ] [ 30 ] MMP-3野生型(WT) マウスとノックアウト (KO) マウスを使用して実施された研究では、MMP-3 は外傷後の BBB 透過性を増加させることが示されました。[ 31 ] WT マウスは、 TBI 後の KO マウスよりもクローディン-5 とオクルディンのレベルが低いことが示されました。クローディンとオクルディンは、血液脳関門の細胞間の密着結合の形成に不可欠なタンパク質です。 [ 32 ] [ 33 ]損傷を受けていない WT マウスと KO マウスの脳組織も活性 MMP-3 で処理されました。 WT 組織と KO 組織の両方で、クローディン 5、オクルディン、ラミニン-α1 (基底膜タンパク質) の減少が見られ、MMP-3 がタイトジャンクションと基底膜タンパク質を直接破壊することを示唆しています。

MMP-3は脊髄損傷(SCI)後、血液脳関門と機能的に同等な血液脊髄関門(BSCB)にも損傷を与える[ 34 ]。MMP-3 WTマウスとKOマウスを用いた同様の研究では、MMP-3はBSCBの透過性を高めることが示され、脊髄損傷後、WTマウスはKOマウスよりも高いBSCB透過性を示した。同じ研究では、脊髄組織をMMP-3阻害剤で処理した場合、BSCBの透過性が低下することも見出された。これらの結果は、MMP-3の存在がSCI後のBSCBの透過性を高めるのに役立つことを示唆している。[ 35 ]この研究では、MMP-3がBBBに損傷を与えるのと同様に、MMP-3がクローディン-5、オクルディン、ZO-1(別のタイトジャンクションタンパク質)を分解することによってこの損傷を起こすことが示された。

血液脳関門と血液脊髄関門の透過性の増加により、炎症部位の脳と脊髄に多くの好中球が浸潤する。 [ 31 ]好中球はMMP-9を保有しており[ 36 ] 、これはオクルディンを分解することも示されている。[ 37 ] これはBBBとBSCBのさらなる破壊につながる[ 38 ]

参考文献

  1. ^ a b c GRCh38: Ensemblリリース89: ENSG00000149968Ensembl、2017年5月
  2. ^ a b c GRCm38: Ensemblリリース89: ENSMUSG00000043613Ensembl、2017年5月
  3. ^ 「ヒトPubMedリファレンス:」米国国立医学図書館、国立生物工学情報センター
  4. ^ 「マウスPubMedリファレンス:」米国国立医学図書館、国立生物工学情報センター
  5. ^ 「Entrez Gene:MMP3マトリックスメタロペプチダーゼ3(ストロメリシン1、プロゼラチナーゼ)」
  6. ^ 「MMP3(ヒト)」www.phosphosite.org . 2021年10月5日閲覧
  7. ^ Emonard H, Grimaud JA (1990). 「マトリックスメタロプロテアーゼ. レビュー」.細胞および分子生物学. 36 (2): 131– 53. PMID 2165861 . 
  8. ^ Chin JR, Murphy G, Werb Z (1985年10月). 「ストロメリシン:刺激を受けたウサギ滑膜線維芽細胞がコラーゲナーゼと並行して分泌する結合組織分解性メタロエンドペプチダーゼ。生合成、単離、特性解析、および基質」 . The Journal of Biological Chemistry . 260 (22): 12367–76 . doi : 10.1016/S0021-9258(17)39034-8 . PMID 2995374 . 
  9. ^ Okada Y, Nagase H, Harris ED (1986年10月). 「ヒトリウマチ滑膜線維芽細胞由来の結合組織マトリックス成分を分解するメタロプロテアーゼ.精製および特性解析」 . The Journal of Biological Chemistry . 261 (30): 14245–55 . doi : 10.1016/S0021-9258(18)67011-5 . PMID 3095317 . 
  10. ^ Docherty AJ, Murphy G (1990年6月). 「組織メタロプロテアーゼファミリーと阻害剤TIMP:cDNAと組み換えタンパク質を用いた研究」Annals of the Rheumatic Diseases . 49 (Suppl 1): 469–79 . PMID 2197998 . 
  11. ^ a b c Ye S, Eriksson P, Hamsten A, Kurkinen M, Humphries SE, Henney AM (1996年5月). 「冠動脈アテローム性動脈硬化症の進行は、ヒトストロメリシン-1プロモーターの共通遺伝子変異と関連しており、その結果、遺伝子発現が低下する」 . The Journal of Biological Chemistry . 271 (22): 13055–60 . doi : 10.1074/jbc.271.22.13055 . PMID 8662692 . 
  12. ^ a b Eguchi T, Kubota S, Kawata K, Mukudai Y, Uehara J, Ohgawara T, Ibaragi S, Sasaki A, Kuboki T, Takigawa M (2008年4月). 「ヒトマトリックスメタロプロテアーゼ3の新規転写因子様機能によるCTGF/CCN2遺伝子の制御」 . Molecular and Cellular Biology . 28 (7): 2391– 413. doi : 10.1128/MCB.01288-07 . PMC 2268440. PMID 18172013 .  
  13. ^ Matrisian LM (1990年4月). 「マトリックスリモデリングにおけるメタロプロテアーゼとその阻害剤」. Trends in Genetics . 6 (4): 121–5 . doi : 10.1016/0168-9525(90)90126-Q . PMID 2132731 . 
  14. ^ Ye S, Watts GF, Mandalia S, Humphries SE, Henney AM (1995年3月). 「予備報告:ヒトストロメリシンプロモーターにおける遺伝的変異は冠動脈アテローム性動脈硬化症の進行と関連している」 . British Heart Journal . 73 (3): 209–15 . doi : 10.1136 / hrt.73.3.209 . PMC 483800. PMID 7727178 .  
  15. ^寺島正之、秋田 浩、金沢 健、井上 暢、山田 聡、伊藤 健、松田 雄一、高井 栄、岩井 千恵子、黒金 秀、吉田 雄一、横山 正之 (1999年6月). 「ストロメリシンプロモーター5A/6A多型は急性心筋梗塞と関連する」 . Circulation . 99 (21): 2717–9 . doi : 10.1161/01.cir.99.21.2717 . hdl : 20.500.14094/D1002146 . PMID 10351963 . 
  16. ^ Yoon S, Tromp G, Vongpunsawad S, Ronkainen A, Juvonen T, Kuivaniemi H (1999年11月). 「フィンランド人の腹部大動脈瘤または頭蓋内動脈瘤患者におけるMMP3、MMP9、およびPAI-1の遺伝子解析」.生化学および生物物理学的研究通信. 265 (2): 563–8 . Bibcode : 1999BBRC..265..563Y . doi : 10.1006/bbrc.1999.1721 . PMID 10558909 . 
  17. ^ Humphries SE, Luong LA, Talmud PJ, Frick MH, Kesäniemi YA, Pasternack A, Taskinen MR, Syvänne M (1998年7月). 「ストロメリシン-1(MMP-3)遺伝子プロモーターにおける5A/6A多型は、LOCATゲムフィブロジル試験における男性における血管造影検査で判明した冠動脈疾患の進行を予測する。ロピッド冠動脈造影試験」. Atherosclerosis . 139 (1): 49– 56. doi : 10.1016/S0021-9150(98)00053-7 . PMID 9699891 . 
  18. ^ de Maat MP、Jukema JW、Ye S、Zwinderman AH、Moghaddam PH、Beekman M、Kastelein JJ、va​​n Boven AJ、Bruschke AV、Humphries SE、Kluft C、Henney AM (1999 年 3 月)。 「冠動脈アテローム性動脈硬化症および再狭窄におけるプラバスタチンの有効性に対するストロメリシン-1 プロモーターの効果」。アメリカ心臓病学会誌83 (6): 852–6 .土井: 10.1016/S0002-9149(98)01073-XPMID 10190398 
  19. ^ Letra A, Silva RA, Menezes R, Astolfi CM, Shinohara A, de Souza AP, Granjeiro JM (2007年10月). 「MMP遺伝子多型は口唇裂・口蓋裂の要因となる:MMP3との関連性はあるもののMMP1との関連性は低い」Archives of Oral Biology . 52 (10): 954–60 . doi : 10.1016/j.archoralbio.2007.04.005 . PMID 17537400 . 
  20. ^ Bueno DF, Sunaga DY, Kobayashi GS, Aguena M, Raposo-Amaral CE, Masotti C, Cruz LA, Pearson PL, Passos-Bueno MR (2011年6月). 「口唇裂・口蓋裂患者由来のヒト幹細胞培養は、対照群と比較して、細胞外マトリックスモデリングに関与する転写産物の濃縮を示す」 . Stem Cell Reviews . 7 (2): 446– 57. doi : 10.1007/ s12015-010-9197-3 . PMC 3073041. PMID 21052871 .  
  21. ^ Gomis-Rüth FX, Maskos K, Betz M, Bergner A, Huber R, Suzuki K, Yoshida N, Nagase H, Brew K, Bourenkov GP, Bartunik H, Bode W (1997年9月). 「TIMP-1によるヒトマトリックスメタロプロテアーゼStromelysin-1の阻害機構」. Nature . 389 ( 6646): 77– 81. Bibcode : 1997Natur.389...77G . doi : 10.1038/37995 . PMID 9288970. S2CID 152666 .  
  22. ^ Massova I, Kotra LP, Fridman R, Mobashery S (1998年9月). 「マトリックスメタロプロテアーゼ:構造、進化、そして多様化」. FASEB Journal . 12 (25n26): 1075–95 . CiteSeerX 10.1.1.31.3959 . doi : 10.1142/S0217984998001256 . PMID 9737711 .  
  23. ^ a b Pelmenschikov V, Siegbahn PE (2002年11月). 「マトリックスメタロプロテアーゼの触媒機構:2層ONIOM研究」.無機化学. 41 (22): 5659–66 . doi : 10.1021/ic0255656 . PMID 12401069 . 
  24. ^ Hangauer DG, Monzingo AF, Matthews BW (1984年11月). 「サーモリシン触媒ペプチド切断とN-カルボキシメチルジペプチドによる阻害に関するインタラクティブコンピュータグラフィックス研究」.生化学. 23 (24): 5730–41 . doi : 10.1021/bi00319a011 . PMID 6525336 . 
  25. ^ Pelmenschikov V, Blomberg MR, Siegbahn PE (2002年3月). 「サーモリシンによるペプチド加水分解機構の理論的研究」. Journal of Biological Inorganic Chemistry . 7 (3): 284–98 . doi : 10.1007/s007750100295 . PMID 11935352. S2CID 23262392 .  
  26. ^ a b Vasilevskaya T, Khrenova MG, Nemukhin AV, Thiel W (2015年8月). 「QM/MMモデリングによるマトリックスメタロプロテアーゼ-2のタンパク質分解メカニズムの解明」 . Journal of Computational Chemistry . 36 (21): 1621–30 . Bibcode : 2015JCoCh..36.1621V . doi : 10.1002 / jcc.23977 . PMID 26132652. S2CID 25062943 .  
  27. ^ Harrison RK, Chang B, Niedzwiecki L, Stein RL (1992年11月). 「ヒトマトリックスメタロプロテアーゼStromelysinの機構研究」.生化学. 31 (44): 10757–62 . doi : 10.1021/bi00159a016 . PMID 1420192 . 
  28. ^ Browner MF, Smith WW, Castelhano AL (1995年5月). 「マトリライシン阻害因子複合体:メタロプロテアーゼに共通するテーマ」.生化学. 34 (20): 6602–10 . doi : 10.1021/bi00020a004 . PMID 7756291 . 
  29. ^ Falo MC, Fillmore HL, Reeves TM, Phillips LL (2006年9月). 「マトリックスメタロプロテアーゼ-3の発現プロファイルは、外傷性脳損傷によって引き起こされる適応的および不適応的シナプス可塑性を区別する」. Journal of Neuroscience Research . 84 (4): 768–81 . doi : 10.1002/jnr.20986 . PMID 16862547. S2CID 7191007 .  
  30. ^ Morita-Fujimura Y, Fujimura M, Gasche Y, Copin JC, Chan PH (2000年1月). 「トランスジェニックマウスにおける銅および亜鉛スーパーオキシドディスムターゼの過剰発現は、寒冷損傷誘発性脳外傷後のマトリックスメタロプロテアーゼの誘導および活性化を阻害する」 . Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism . 20 (1): 130–8 . doi : 10.1097/00004647-200001000-00017 . PMID 10616801 . 
  31. ^ a b Gurney KJ, Estrada EY, Rosenberg GA (2006年7月). 「ストロメリシン-1による血液脳関門の破壊は神経炎症における好中球浸潤を促進する」. Neurobiology of Disease . 23 (1): 87– 96. doi : 10.1016/j.nbd.2006.02.006 . PMID 16624562. S2CID 20979287 .  
  32. ^古瀬 正之、藤田 健、柊 剛志、藤本 健、月田 聡 (1998年6月). 「クローディン-1および-2:オクルディンと配列類似性のないタイトジャンクションに局在する新規膜貫通タンパク質」 .細胞生物学ジャーナル. 141 (7): 1539–50 . doi : 10.1083 / jcb.141.7.1539 . PMC 2132999. PMID 9647647 .  
  33. ^ Nitta T, Hata M, Gotoh S, Seo Y, Sasaki H, Hashimoto N, Furuse M, Tsukita S (2003年5月). 「クローディン5欠損マウスにおける血液脳関門のサイズ選択的緩み」 . The Journal of Cell Biology . 161 (3): 653–60 . doi : 10.1083/jcb.200302070 . PMC 2172943. PMID 12743111 .  
  34. ^ Bartanusz V, Jezova D, Alajajian B, Digicaylioglu M (2011年8月). 「血液脊髄関門:形態と臨床的意義」Annals of Neurology . 70 (2): 194– 206. doi : 10.1002/ana.22421 . PMID 21674586 . S2CID 15642099 .  
  35. ^ Lee JY, Choi HY, Ahn HJ, Ju BG, Yune TY (2014年11月). 「マトリックスメタロプロテアーゼ-3は脊髄損傷後の早期の血液脊髄関門の破壊と出血を促進し、長期的な神経学的回復を阻害する」 . The American Journal of Pathology . 184 (11): 2985– 3000. doi : 10.1016/j.ajpath.2014.07.016 . PMID 25325922 . 
  36. ^オプデナッカー G、ヴァン デン スティーン PE、デュボア B、ネリッセン I、ヴァン コイリー E、マスレ S、プルースト P、ヴァン ダム J (2001 年 6 月)。「ゼラチナーゼ B は、白血球生物学において調節因子およびエフェクターとして機能します。 」白血球生物学ジャーナル69 (6): 851–9 .土井: 10.1189/jlb.69.6.851PMID 11404367S2CID 15851048  
  37. ^ Giebel SJ, Menicucci G, McGuire PG, Das A (2005年5月). 「早期糖尿病網膜症におけるマトリックスメタロプロテアーゼと血液網膜関門の変化における役割」 .実験室調査; 技術的方法と病理学のジャーナル. 85 (5): 597– 607. doi : 10.1038/labinvest.3700251 . PMID 15711567 . 
  38. ^オーベ B、レヴェスク SA、パレ A、シャンマ É、ケビール H、ゴリーナ R、レクイエ MA、アルバレス JI、デ コニンク Y、エンゲルハルト B、プラット A、コート D、ラクロワ S (2014 年 9 月)。「好中球は、脱髄性神経炎症性疾患における血液脊髄関門の破壊を媒介します。 」免疫学ジャーナル193 (5): 2438–54 .土井: 10.4049/jimmunol.1400401PMID 25049355 

さらに読む